Визуализирующая проточная цитометрия для медико-биологических исследований
https://doi.org/10.29235/1818-9857-2022-4-71-78
Аннотация
Представлены основные сведения о визуализирующей проточной цитометрии (ВПЦ), ее отличия от традиционной цитофлуориметрии и флуоресцентной микроскопии. Изложены принципы данного метода, его возможности в анализе клеток, микроорганизмов и микрочастиц, области применения, описано устройство приборов, процессы учета и анализа данных.
Об авторе
А. Гончаров
Институт биофизики и клеточной инженерии НАН Беларуси
Беларусь
Беларусь
Андрей Гончаров, директор, кандидат медицинских наук, доцент
Список литературы
1. Manohar S.M. Flow cytometry: principles, applications and recent advances / S.M. Manohar [et al.] // Bioanalysis. 2021. Vol. 13, №3. P.181–198.
2. McKinnon K.M. Flow Cytometry: An Overview / K.M. McKinnon // Curr Protoc Immunol. 2018. Ch. 5.1.1–5.1.11.
3. Chelkar M. Flow cytometry: Principle and applications / M. Chelkar, S.Panda// Pharma Innov. J. 2020. Vol. 9, №10. P.6–9.
4. BD Spectrum Viewer // BD Biosciences. https://www.bdbiosciences.com/en-us/resources/bd-spectrum-viewer.
5. Amnis® ImageStream®X Mk II // Luminex Corp. https://www.luminexcorp.com/imagestreamx-mk-ii.
6. Doan M. Diagnostic Potential of Imaging Flow Cytometry/ M. Doan [et al.] // Trends Biotechnol. 2018. Vol. 36, №7. P.649–652.
7. Lippeveld M.Classification of Human White Blood Cells Using Machine Learning for Stain-Free Imaging Flow Cytometry/ Maxim Lippeveld[et al.] // Cytometry Part A. 2020. Vol. 97, №3. P.308–319.
8. Bargieri D.Y. Apical membrane antigen 1 mediates apicomplexan parasite attachment but is dispensable for host cell invasion / D.Y. Bargieri [et al.] // Nature Communications. 2013. Vol. 4. P.2552.
9. Barteneva N . S . Circulating microparticles: Square the circle / N.S. Barteneva[et al] // BMC cell biology. 2013. Vol. 14, №23. P.21.
10. Baruch K.Cerebral nitric oxide represses choroid plexus NFκB-dependent gateway activity for leukocyte trafficking/ K. Baruch [et al.] // The EMBO Journal. 2015. Vol. 34, №13. P.1816–1828.
11. Begum J. A method for evaluating the use of fluorescent dyes to track proliferation in cell lines by dye dilution / J. Begum[et al.] // Cytometry. Part A: the journal of the International Society for Analytical Cytology. 2013. Vol. 83, №12. P.1085–1095.
12. Chang S. Impaired expression and function of toll-like receptor 7 in hepatitis C virus infection in human hepatoma cells / S.Chang, K. Kodys, G.Szabo// Hepatology. 2010. Vol. 51, №1. P.35–42.
13. ChoyC.H. Aggregation and size attributes analysis of unadsorbed and adjuvantadsorbed antigens using a multispectral imaging flow cytometer platform / C.H.Choy[et al] // Journal of pharmaceutical sciences. 2021.
14. Deng L.Contrasting life strategies of viruses that infect photo- and heterotrophic bacteria, as revealed by viral tagging/ L. Deng[et al] // mBio 2019. Vol. 3, №6.
15. Durdik M. Imaging flow cytometry as a sensitive tool to detect low-dose-induced DNA damage by analyzing 53BP1 and γH2AX foci in human lymphocytes / M. Durdik[et al] // Cytometry. Part A: the journal of the International Society for Analytical Cytology. 2013. Vol. 87, №12. P.1070–1078.
16. Fertrin K . Y. Sickle cell imaging flow cytometry assay (SIFCA) / K.Y. Kleber [et al] // Methods in molecular biology. 2016. Vol. 1389. P.279–292.
Рецензия
Для цитирования:
Гончаров А. Визуализирующая проточная цитометрия для медико-биологических исследований. Наука и инновации. 2022;(4):71-78. https://doi.org/10.29235/1818-9857-2022-4-71-78
For citation:
Goncharov A. Imaging flow cytometry for life sciences. Science and Innovations. 2022;(4):71-78. (In Russ.) https://doi.org/10.29235/1818-9857-2022-4-71-78
Просмотров: 409
Послать статью по эл. почте 